In-vitro-Fertilisation bei Mäusen
Die In-vitro-Fertilisation bei Mäusen bezeichnet die künstliche Befruchtung bei Mäusen.
Eigenschaften
[Bearbeiten | Quelltext bearbeiten]Während es im Falle der humanen In-vitro-Fertilisation um die Unterstützung der Verwirklichung des Kinderwunsches eines Paares geht, hat die Maus-In-vitro-Fertilisation in der medizinisch-biologischen Forschung den Zweck Maus-Nachkommen mit einem spezifischen Genotyp zu generieren und dabei das zeitintensive Kreuzen von den entsprechenden parental Generationen zu umgehen. Zudem wird die In-vitro-Fertilisation zum Rederivieren von Mäusen mittels kryokonservierter Spermien im Zuge der Archivierung und Verteilung genetisch veränderter Mauslinien genutzt.[1]
Vorgehensweise
[Bearbeiten | Quelltext bearbeiten]Induktion der Superovulation
[Bearbeiten | Quelltext bearbeiten]Um die Zahl der ovulierenden Follikel in der geschlechtsreifen, weiblichen Maus künstlich zu erhöhen (Superovulation) wird das Serum-Gonadotropin von trächtigen Stuten (Pregnant Mare Serum Gonadotropin, PMSG) in die Maus injiziert. Zusätzlich wird humanes Choriongonadotropin (hCG) injiziert. Dieses Peptidhormon induziert den Eisprung, führt zur Bildung des Gelbkörpers – und bei der männlichen Maus zur Bildung der interstitiellen Zellen der Testikel. Der Aschheim-Zondek-Reaktion war einer der ersten Schwangerschaftstests und nutzte dabei die Choriongonadotropin-Ausschüttung zur Schwangerschaftsbestimmung.[2]
Die vielkernigen Synzytiotrophoblasten synthetisieren Choriongonadotropin, welches den im Eierstock befindlichen Gelbkörper (Corpus luteum) zur Ausschüttung von Progesteron anregt. Dieses Sexualhormon ist für den Aufbau der Uterusschleimhaut verantwortlich und verhindert zusätzlich neue Eisprünge mittels negativer Rückkopplung zur Hypophyse der Eierstöcke.
Plattenvorbereitung
[Bearbeiten | Quelltext bearbeiten]Die In-vitro-Fertilisation der Maus erfolgt meist auf speziellen Platten. Dazu wird mittels einer Mikropipette verschiedene Medium-Tropfen auf diese pipettiert und anschließend mit flüssigem Paraffin bedeckt.
Für die Platte der Spermien wird ein Tropfen Präinkubationsmedium verwendet. Analog wird mit einem Tropfen des Fertilisationsmediums bei der Präparation der Fertilisationsplatte vorgegangen.
Vier Tropfen Modified Human Tubal Fluid Medium – HEPES Puffer (mHTF)[3] werden auf eine Platte gegeben, in flüssigem Paraffin eingeschlossen und dienen als Waschlösung. mHTF dient der Effizienzsteigerung der Methode[4] und stabilisiert den pH-Wert für optimale, stressfreie Bedingungen während der Fertilisation.[5]
Sammeln von Spermatozoen
[Bearbeiten | Quelltext bearbeiten]Zur Gewinnung der Spermatozoen wird der Schweif des Nebenhodens einer geschlechtsreifen, männlichen Maus in eine Sperma-Platte gelegt und der Samenleiter durchtrennt. Die Spermien werden dann mittels einer Präpariernadel freigesetzt und anschließend in das Präinkubationsmedium auf der Spermaplatte überführt.
Sammeln von Oozyten
[Bearbeiten | Quelltext bearbeiten]Der Eileiter einer superovulierenden, geschlechtsreifen Maus wird ebenso auf die Fertilisationsplatte transferiert und die Cumulus-Oozyten-Komplexe (COCs), ein Komplex aus einer Oozyte, die von spezialisierten Granulosazelle umgeben ist, mit Hilfe einer Präpariernadel isoliert. Auch in diesem Fall folgt der Transfer in das Fertilisationsmedium.
Besamung
[Bearbeiten | Quelltext bearbeiten]Für die Besamung wird ein Teil der Spermien-Suspension in das COC-enthaltende Fertilisationsmedium übertragen. Nach einer dreistündigen Inkubationsphase werden die Oozyten dreimal in den mHTF-Tropfen auf der Waschplatte gewaschen. Der Oozyten-Transfer auf die Fertilisationsplatte muss dabei äußerst sorgfältig, ohne Reste des Fertilisationsmediums erfolgen. Im letzten der drei Waschschritte findet eine Untersuchung der Pronuklei der Oozyten statt, um parthenogenen Oozyten, die nur einen Pronukleus aufweisen, auszusortieren. Erfolgreich befruchtete Oozyten besitzen hingegen zwei Pronuklei, einen männlichen und einen weiblichen. Am folgenden Tag werde die Zwei-Zell-Stadien in den letzten der vier Tropfen mHTF der Wasch-Platte transferiert. Im Folgenden ist ihre Vitrifizierung, ihre weitere Kultivierung oder ihr Transfer in ein Empfänger-Weibchen möglich.
Das Empfänger-Weibchen
[Bearbeiten | Quelltext bearbeiten]Bei dem Empfänger Weibchen handelt es sich um ein scheinträchtiges Weibchen, dessen Hormonproduktion der eines trächtigen Weibchens entspricht. Die Hormonproduktion wird dabei durch die Kopulation des Weibchens mit einem vasektomierten und daher unfruchtbaren Männchens induziert.
Ethische Hintergründe zur Gewinnung des Brunftsynchronisationshormons
[Bearbeiten | Quelltext bearbeiten]Das PMSG-Hormon wird nicht nur für die In-vitro-Fertilisation bei Mäusen, sondern in größeren Mengen vor allem von der europäischen Fleischindustrie in der Schweineproduktion eingesetzt. Die Tierschutzorganisation „Animal Welfare Foundation“ veröffentlichte 2015 ein Video, das den Umgang mit den trächtigen Stuten in Südamerika bei deren Blutentnahme zeigt. Für den größtmöglichen Profit ist es dabei von Vorteil, die Stuten so oft wie möglich zu befruchten, um ihnen das für die Industrie wertvolle Blutserum entnehmen zu können. Die Blutentnahme kann bis zu zwei Mal wöchentlich erfolgen und umfasst die Entnahme von 10 Liter Blut, was knapp einem Viertel des gesamten Blutvolumens einer Stute beträgt.[6]
Einzelnachweise
[Bearbeiten | Quelltext bearbeiten]- ↑ Magdalena Wigger, Simon E. Tröder, Branko Zevnik: A simple and economic protocol for efficient in vitro fertilization using cryopreserved mouse sperm. In: PLOS ONE. Band 16, Nr. 10, 28. Oktober 2021, ISSN 1932-6203, S. e0259202, doi:10.1371/journal.pone.0259202 (plos.org [abgerufen am 29. Oktober 2021]).
- ↑ Choriongonadotropin - Lexikon der Biochemie. (spektrum.de [abgerufen am 6. August 2017]).
- ↑ Magdalena Wigger, Marco Schneider, Anni Feldmann, Sonja Assenmacher, Branko Zevnik, Simon E. Tröder: Successful use of HTF as a basal fertilization medium during SEcuRe mouse in vitro fertilization. In: BMC Research Notes. Band 16, Nr. 1, 24. August 2023, ISSN 1756-0500, doi:10.1186/s13104-023-06452-6 (biomedcentral.com [abgerufen am 25. August 2023]).
- ↑ Seiji Kito, Yuki Ohta: Medium effects on capacitation and sperm penetration through the zona pellucida in inbred BALB/c spermatozoa. In: Zygote (Cambridge, England). Band 13, Nr. 2, Mai 2005, ISSN 0967-1994, S. 145–153, PMID 16128410.
- ↑ Jason E. Swain, Marlane Angle, Nadir Ciray, Juergen Liebermann, Thomas Pool: A Commercially Available Dual - Buffered IVF Handling Medium Containing HEPES and MOPS Maintains Stable pH and Supports Human Sperm Survival, Normal Fertilization Following ICSI and Embryo Development. (PDF) Abgerufen am 6. August 2017.
- ↑ Wie Pharmakonzerne mit Pferdeblut Geschäfte machen. In: sueddeutsche.de. 29. September 2015, abgerufen am 20. August 2018.