S9-Mix
Der S9-Mix ist eine Präparation einer Mischung von Leberenzymen. Er wird bei in-vitro-Versuchen zur Simulation einer Leber ohne Tierversuch eingesetzt. Er ist Bestandteil verschiedener OECD-Richtlinien zur Prüfung von Chemikalien.
Eigenschaften
[Bearbeiten | Quelltext bearbeiten]Da die Leber mit Hilfe von Enzymen Stoffe im Blut verändern kann und maßgeblich an der Entgiftung beteiligt ist, wären tierversuchsfreie toxikologische Tests von möglicherweise giftigen und insbesondere von mutagenen Substanzen ohne Betrachtung dieser Enzyme nicht sehr aussagekräftig, wie z. B. der Ames-Test. Daher wird der S9-Mix oftmals in Kombination mit dem Ames-Test verwendet,[1] um auch die Wirkung der Metaboliten des zu untersuchenden Stoffs miteinzubeziehen.[2] Der S9-Mix enthält die meisten Transferasen der Leber, die bei der Entgiftung beteiligt sind.[3] Während manche zu untersuchenden Stoffe erst in Anwesenheit des S9-Mixes mutagen werden,[4] verlieren manche Mutagene ihre Mutagenität durch Leberenzyme.[5] Der S9-Mix besitzt seinerseits zwar keine mutagenen, aber zytotoxische Eigenschaften, die zellbasierte Versuche beeinflussen können.[6]
Die Abkürzung „S9“ kommt von Supernatant (Überstand) der Zentrifugation bei 9000 g.[7][8] Teilweise werden alternativ Tests basierend auf HepaRG-Zellen, 3D-Zellkultur und Organ-on-a-Chip verwendet.[6] Daneben wird der S9-Mix zur Untersuchung der biologischen Halbwertszeit von potenziellen Arzneistoffen verwendet.[9]
Gewinnung
[Bearbeiten | Quelltext bearbeiten]Meist wird S9 aus Ratten gewonnen und verwendet. Zur Präparation: Ratten werden mit Enzyminduktoren vorbehandelt, z. B. fünf Tage vor Tötung einmal mit 500 mg/kg KG Aroclor 1254[10] (ein PCB-Gemisch). Nach Isolierung der Leber wird diese in 0,25 M Saccharose homogenisiert und bei 9000 g für 10 Minuten zentrifugiert. Der Überstand nach der Zentrifugation ist per Definition der S9-Mix. Zentrifugiert man diesen S9-Mix anschließend bei 100.000 g für eine Stunde, so erhält man ein Mikrosomen-Niederschlag und einen Überstand der zytosolischen Bestandteile. Der S9-Mix ist technisch einfacher herzustellen als die Mikrosomen-Fraktion.[11]
Metabolische Aktivierung
[Bearbeiten | Quelltext bearbeiten]Durch das PCB-Gemisch werden diverse Cytochrom-P450-Enzyme (CYP) aktiviert. Stark aktiviert werden CYP1A1, 2B1 und 2B4. Moderat aktiviert werden CYP2A1, 2B1, 2C5, 2C6, 3A2, 3A4, 4B1, P450 Reduktase, mikrosomale Epoxidhydrolase (mEH), UDP-GT und GST-Isoenzyme.
Verwendung im Ames-Test
[Bearbeiten | Quelltext bearbeiten]Im Ames-Test wird ein S9-Standardmix eingesetzt, bestehend aus 10 % S9-Fraktion, 4 mM NADP, 5 mM Glucose-6-phosphat, 10 mM Na/K-Phosphatpuffer (pH 7,4), 8 mM Mg-Aspartat, 33 mM KCl.
Literatur
[Bearbeiten | Quelltext bearbeiten]- Shayne Cox Gad: Drug Safety Evaluation (= Pharmaceutical Development Series). 2nd Auflage. John Wiley and Sons, 2009, ISBN 978-0-470-25316-8, Genotoxicity, S. 253 ff.
Einzelnachweise
[Bearbeiten | Quelltext bearbeiten]- ↑ Atsushi Sakura, Satoshi Suzuki, Tetsuo Satoh: Optimization in drug discovery: in vitro methods. Hrsg.: Zhengyin Yan, Gary Caldwell (= Methods in pharmacology and toxicology). Humana Press, 2004, ISBN 1-58829-332-7, Improvement of the Ames test using human liver S9 preparation, S. 325–336.
- ↑ K. Mortelmans, E. Zeiger: The Ames Salmonella/microsome mutagenicity assay. In: Mutation Research. Band 455, Nummer 1–2, November 2000, S. 29–60, doi:10.1016/s0027-5107(00)00064-6, PMID 11113466.
- ↑ Helmut Greim, Robert Snyder: Toxicology and risk assessment: a comprehensive introduction. Wiley-Interscience, 2008, ISBN 978-0-470-86893-5, S. 387.
- ↑ K. T. Chung, L. Kirkovsky, A. Kirkovsky, W. P. Purcell: Review of mutagenicity of monocyclic aromatic amines: quantitative structure-activity relationships. In: Mutation Research. Band 387, Nummer 1, August 1997, S. 1–16, doi:10.1016/s1383-5742(97)00019-7, PMID 9254889.
- ↑ T. Sugimura, S. Takayama: Biological actions of nitroarenes in short-term tests on Salmonella, cultured mammalian cells and cultured human tracheal tissues: possible basis for regulatory control. In: Environmental health perspectives. Band 47, Januar 1983, S. 171–176, doi:10.1289/ehp.8347171, PMID 6337823, PMC 1569395 (freier Volltext).
- ↑ a b M. Ooka, C. Lynch, M. Xia: Application of In Vitro Metabolism Activation in High-Throughput Screening. In: International Journal of Molecular Sciences. Band 21, Nummer 21, Oktober 2020, S. , doi:10.3390/ijms21218182, PMID 33142951, PMC 7663506 (freier Volltext).
- ↑ OECD: Guidance Documenton Revisions to OECD Genetic Toxicology Test Guidelines, 2015, S. 58.
- ↑ J. H. Duffus, M. Nordberg, D. M. Templeton: Glossary of Terms Used in Toxicology, 2nd Edition. In: Pure Appl Chem. 79. Jahrgang, Nr. 7, 2007, S. 1153–1344, doi:10.1351/pac200779071153.
- ↑ W. N. Wu, L. A. McKown: Optimization in Drug Discovery: In Vitro Methods (Methods in Pharmacology and Toxicology). Humana Press, Totowa, NJ 2004, ISBN 1-58829-332-7, Chapter 11: In Vitro Drug Metabolite Profiling Using Hepatic S9 and Human Liver Microsomes, S. 163–184, doi:10.1385/1-59259-800-5:163.
- ↑ Externe Identifikatoren von bzw. Datenbank-Links zu Aroclor 1254: CAS-Nr.: 11097-69-1, EG-Nr.: 601-021-3, ECHA-InfoCard: 100.121.913, PubChem: 40470, Wikidata: Q21058099.
- ↑ H. Gerhard Vogel: Drug discovery and evaluation: safety and pharmacokinetic assays. Springer, 2006, ISBN 3-540-25638-5, S. 509.